به جمع مشترکان مگیران بپیوندید!

تنها با پرداخت 70 هزارتومان حق اشتراک سالانه به متن مقالات دسترسی داشته باشید و 100 مقاله را بدون هزینه دیگری دریافت کنید.

برای پرداخت حق اشتراک اگر عضو هستید وارد شوید در غیر این صورت حساب کاربری جدید ایجاد کنید

عضویت

فهرست مطالب غزل قجری

  • عباسعلی یداللهی*، غزل قجری
    هدف
    اطلاعات کمی در مورد متابولیسم قند و نحوه ادغام آن با سایر مواد، در مقایسه با سایر محصولات فتوسنتزی اولیه (مانند ساکارز و نشاسته) وجود دارد. Mannose-6-phosphate reductase (M6PR) یک آنزیم کلیدی است که در بیوسنتز مانیتول در کرفس نقش دارد. هدف از این پژوهش  همسانه سازی ژن، بررسی بیان ژن و تخلیص آنزیمM6PR  و بررسی عملکرد آن بر روی ژن های جهش یافته در محیط آزمایشگاهی بوده است.
    مواد و روش ها
    ابتدا  استخراج mRNA از گیاه کرفس انجام شدو سپس سنتز cDNA صورت گرفت و محصول به عنوان الگو در تکثیر ژن M6PR  مورد استفاده قرار گرفت..محصول PCR توسط کیت استخراج DNA از روی ژل، تخلیص شد. محصول PCR خالص شده مطابق با دستور العمل T/A Cloning (فرمنتاز) در ناقل pTZ57R همسانه سازی شد. سلول مستعد E.coli سویه Top10 با استفاده از روش بیوشیمیایی کلرید کلسیم تهیه شد و وکتور نوترکیب درون آن ترانسفورم و روی پلیت حاوی آمپی سیلین کشت داده شدند. صحت کلونینگ با استفاده از PCR ژن M6PR  و هضم آنزیمی پلاسمید نوترکیب توسط آنزیم های BamHI, SacI (شرکت فرمنتاز) انجام گرفت.  سپسژن M6PR  در پلاسمید بیانی pET32a  همسانه سازی شد و درون باکتری E.coli سویه BL2I انتقال داده شد. پیشبر ژن با IPTG القا شد و با وسترن بلاتینگ مورد بررسی قرار گرفت.  پروتیین تولید شده با ستون کروماتوگرافی تمایلی (His.Tag/S.Tag) تخلیص شد.
    نتایج
    نتایج نشان دادند که آنزیم می تواند نواحی هترودوبلکس ژن را شناسایی کند. M6PR  نوترکیب خالص شده از اشریشیا کلی،دارای فعالیت خاص مولکولی بود. نتایج حاصل از هضم دوگانه پلاسمید با آنزیم های SacI و BamHI، قطعات 2870 جفت بازی و 186 جفت بازی بود. قطعه حاضر مطابق با نتیجه ازمون بلاست شباهت 100درصدی با ژن M6PR گیاه کرفس داشت. نتایج بررسی رونویسی ژن نوترکیب M6PR نشان داد که میزان رونویسی ژن نوترکیب M6PR در سویه های تراریخت برابر با 3/2 و در کنترل 32/0 به دست آمد که تفاوت معناداری در سطح P<0.01 را از نظر آماری نشان دادند. پس از القای پیشبر و نمونه برداری در زمان های مختلف، نمونه ها روی ژل SDS-PAGE باند پروتیینی در ناحیه 42 کیلو دالتون را نشان داد که نشان دهنده بیان پروتیین به صورت موفقیت آمیز بود.
    نتیجه گیری
     همسانه سازی ژن آنزیمM6PR  بدست آمده از گیاه کرفس و به دنبال آن تولید این آنزیم به صورت نوترکیب در آزمایشگاه می تواند منجر به بیان بالای  آن در سیستم پروکاریوتی  شود به طوریکه آنزیم دارای فعالیت  باشد. همچنین مطالعه حاضر نشان داد که آنزیم های گیاهی وقتی در باکتری بیان می شوند، فعال می باشند و می توانند به عنوان منبع مناسب برای تسریع فعالیت کاتابولیک استفاده شوند.
    کلید واژگان: آنزیم M6PR, وسترن بلاتینگ, پلاسمید pET32a, پروتئین نوترکیب, کروماتوگرافی تمایلی}
    Abbasali Yadollahi *, Ghazal Ghajari
    Objective
    Compared to other primary photosynthetic products (such as sucrose and starch), little is known about sugar metabolism and how it is integrated with others. Mannose-6-phosphate reductase (M6PR) is a key enzyme involved in mannitol biosynthesis in celery. This study aimed to clone the gene, express and purify the M6PR enzyme and investigate its function on mutated genes in a laboratory environment.
     
    Materials and methods
    First, the mRNA was extracted from the celery plant, then the cDNA was synthesized, and the product was used as a template to amplify the M6PR gene. The PCR product was purified in a DNA gel extraction kit. The purified PCR product was cloned into the pTZ57R vector according to the T/A Cloning recipe (Fermentase Company). Susceptible cells of E.coli strain Top10 were prepared using the biochemical method of calcium chloride, and the recombinant vector inside it was transformed and cultured on a plate containing ampicillin. The cloning accuracy was done using M6PR gene PCR and enzymatic digestion of the recombinant plasmid by BamHI and SacI enzymes (Fermentase Company). The M6PR gene was homogenized in the expression plasmid pET32a and transferred into E.coli strain BL2I. The promoter was induced with IPTG and analyzed by western blotting. The protein was purified by affinity chromatography column (His. Tag/S.Tag).
    Results
    The results showed that the enzyme could identify the heteroduplex regions of the gene. The recombinant M6PR purified from Escherichia coli had specific molecular activity. The results of double digestion of the plasmid with SacI and BamHI enzymes were 2870 bp and 186 bp fragments. According to the blast test result, the current fragment had 100% similarity with the M6PR gene of the celery plant. M6PR recombinant gene transcription results showed that the M6PR recombinant gene transcription rate was 2.3 in the transgenic strains and 0.32 in control, which showed a statistically significant difference at the P<0.01 level. After induction of the promoter and sampling at different times, the samples on the SDS-PAGE gel showed a protein band in the region of 42 kDa, indicating the protein's successful expression.
     
    Conclusions
    Homology of M6PR enzyme gene obtained from celery plant and then recombinant production of this enzyme in the laboratory can lead to its high expression in the prokaryotic system so that the enzyme has activity. Also, the present study showed that plant enzymes are active when expressed in bacteria and can be used as a suitable source to accelerate catabolic activity.
    Keywords: : M6PR enzyme, western blotting, pET32a plasmid, recombinant protein, affinity chromatography}
  • غزل قجری*، نگین رجایی، آرجیت چاکرابورتی
    مقدمه

    اسینتوباکتر بومانی، کوکوباسیل گرم منفی غیرتخمیری است که مقاومت بالایی به ترکیبات ضد میکروبی نشان می دهد. تشکیل بیوفیلم یکی از ویژگی های مهم بسیاری از گونه های اسینتوباکتر است که منجر به مقاومت بالا به آنتی بیوتیک ها می شود. مطالعه حاضر با هدف بررسی توانایی تشکیل بیوفیلم و تعیین فعالیت آنتی بیوفیلم نانوذرات کیتوسان در جدایه های بالینی اسینتوباکتر بومانی انجام شد.

    مواد و روش ها

    در این مطالعه توصیفی- مقطعی در سال 1399،تعداد 100 ایزوله از بیمارستان های مختلف جمع آوری و آزمایشات میکروسکوپی، بیوشیمیایی و مولکولی به منظور شناسایی باکتری انجام شد. بررسی الگوی مقاومت آنتی بیوتیکی ایزوله ها با روش انتشار دیسک در مقابل10 آنتی بیوتیک و همچنین توانایی تولید بیوفیلم به روش میکروتیترپلیت بررسی شد. سپس با روش های مولکولی Multiplex-PCR، ژن های 16SrRNA و CsuA شناسایی شدند. پس از تهیه نانوذرات کیتوسان و تعیین غلظت MIC، فعالیت آنتی بیوفیلم توسط روش میکروتیتر پلیت سنجیده شده و میزان بیان ژن CsuA دخیل در بیوفیلم با روش Real Time PCR مورد بررسی قرار گرفت.

    یافته ها

    در این مطالعه از بین 100 ایزوله بررسی شده 29 ایزوله به عنوان اسینتوباکتر بومانی تایید شدند. از بین 29 ایزوله بیشترین مقاومت دارویی متعلق به سفتازیدیم (86/75%) بود. ژن CsuA در 72/51% ایزوله ها ردیابی شد. همچنین با استفاده از روش میکروتیترپلیت و Real Time PCR میزان فعالیت آنتی بیوفیلمی نانوذرات کیتوسان با سطح معنی داری P<0.01 مشخص شد.

    بحث و نتیجه گیری

    با توجه به اثرات ضدبیوفیلمی مطالعه حاضر، به نظر می رسد نانوذره کیتوسان می تواند به عنوان یک کاندید دارویی در صنایع داروسازی مورد استفاده قرار گیرد.

    کلید واژگان: اسینتوباکتر بومانی, بیوفیلم, نانوذرات کیتوسان}
    Ghazal Ghajari*, Negin Rajaei, Arijit Chakraborty
    Introduction

    Acinetobacter baumannii (A. baumannii) is a non-fermentative gram-negative coccobacillus that shows high resistance to antimicrobial compounds. Biofilm formation is one of the essential features of many Acinetobacter species that leads to high antibiotic resistance. This study aimed to evaluate the ability of biofilm formation and determine the antibiofilm activity of chitosan nanoparticles in clinical isolates of A. baumannii.

    Material & Methods

    This descriptive cross-sectional study was conducted in 2021 and investigated 100 isolates collected from different hospitals. Microscopic, biochemical, and molecular tests were performed to identify the bacteria. The antibiotic resistance pattern of the isolates was evaluated by the disk diffusion method against 10 antibiotics, and the ability to produce biofilm was evaluated by microtiter plate method. Subsequently, 16SrRNA and CsuA genes were identified by multiplex-PCR molecular methods. After the preparation of chitosan nanoparticles and determination of MIC concentration, antibiofilm activity was measured by plate microtiter, and Real-Time PCR was used to examine the expression of the CsuA gene involved in biofilm.

    Findings

    In this study, out of 100 isolates examined, 29 isolates were confirmed as A. baumannii. Among 29 isolates, ceftazidime had the highest drug resistance (75.86%). The CsuA gene was detected in 51.72% of the isolates. Moreover, using a microtiter plate and Real-Time PCR, the level of antibiotic activity of chitosan nanoparticles was determined at a significant level of P<0.01.

    Discussion & Conclusion

    Considering the anti-biofilm effects found in the present study, it seems that chitosan nanoparticles can be used as a pharmaceutical candidate in the pharmaceutical industry.

    Keywords: Acinetobacter baumannii, Biofilm, Chitosan nanoparticles}
  • عباسعلی یداللهی*، غزل قجری
    هدف

    گیاهان روغنی بعد از غلات به عنوان دومین منبع تامین کننده کالری برای جوامع بشری محسوب می شوند. گیاه کنجد به دلیل داشتن روغنی با کیفیت و محتوای 43-46% اسید های چرب غیر اشباع، در سال های اخیر مورد توجه قرار گرفته است. به منظور بررسی امکان انتقال ژن نوترکیبaroA-CYP81Q1  با واسطه Agrobacterium tumefaciens  به کنجد که برای اولین بار در کشور گزارش شده است، پس از بهینه سازی کشت بافت و انتخاب بهترین ترکیب هورمونی و بهترین ریزنمونه، آزمایشی به صورت فاکتوریل در قالب طرح کاملا تصادفی در سه تکرار، انجام گرفت.

    مواد و روش ها:

     در این آزمایش ژن نوترکیبaroA-CYP81Q1 سنتز شده و در سویه آگروباکتریوم  (LB4404) ترانسفورم شد. کارآیی و فراوانی تراریختگی کنجد در محیط انتخابی حاوی 50 میلی گرم در لیتر کانامایسین مورد ارزیابی گرفت. در نهایت به منظور تایید تراریختگی گیاهان باززا شده، آنالیزهای PCR با آغازگرهای اختصاصی روی گیاهان انتخابی انجام شد. همچنین میزان بیان ژن مولد سزامین (CYP81Q1) در گروه های کنترل و گروه های تراریخت در سطح معناداری P<0.01 سنجیده شد.

    نتایج

    تجزیه آماری نشان داد که درصد باززایی گیاهچه های تراریخته با استفاده از آگروباکتریوم  (LB4404) در محیط انتخابی حاوی کانامایسین به میزان 33 درصد بود. همچنین تجزیه PCR ژن هدف در گیاهان تراریخته، فراوانی تراریختگی را 33 درصد نشان داد. به علاوه، تکثیر قطعه  1634 جفت بازی، نشان دهنده صحت همسانه سازی در گیاهان تراریخته بود. نتایج بیانگر انتقال موفق ژن نوترکیبaroA-CYP81Q1  به گیاه کنجد می باشد. نتایج تجزیه واریانس نشان داد که اختلاف بسیار معنی داری در بیان ژن مولد سزامین در بین رقم تراریخت شده و گروه های کنترل وجود دارد (P<0.01).

    نتیجه گیری:

     از آنجایی که ناقل های بیانی مبتنی برpBI121 نسبت به سایر ناقل های بیانی، کارایی بالایی داشته و به طور گسترده در انتقال ژن های نوترکیب به گیاهان مورد استفاده قرار می گیرند، ناقل نوترکیب ساخته شده در این پژوهش بیانگر انتقال موفق ژن مولد سزامین به گیاه کنجد برای افزایش ویژگی های صنعتی آن می باشد.

    کلید واژگان: همسانه سازی, سزامین, کنجد, ناقل بیانی}
    Abbasali Yadollahi *, Ghazal Ghajari
    Objective

    Oilseeds are the second-largest source of calories for human societies after cereals. Sesamum indicum has been considered recently due to its oil quality and content of 43-46% unsaturated fatty acids. To investigate the possibility of transferring the recombinant aroA-CYP81Q1 gene through Agrobacterium tumefaciens to the Sesamum indicum plant (reported for the first time in the country), after optimizing tissue culture and selecting the best hormonal combination, a factorial experiment was performed. 

    Materials and methods

    In this experiment, the recombinant aroA-CYP81Q1 gene was synthesized and transformed into an Agrobacterium strain (LB4404). Gene cloning was confirmed by PCR and then confirmed by sequencing. The efficacy and frequency of transgenic Sesamum indicum were evaluated in the selected medium containing 50 mg/l kanamycin. Finally, to confirm the transgenicity of the regenerated plants, PCR analyzes were performed with specific primers on selected plants. Also, the expression of the sesamin-producing gene (CYP81Q1) in control groups and transgenic groups was measured at a significant level of P <0.01.   

    Results

    Statistical analysis showed that the percentage of regeneration of transgenic seedlings using Agrobacterium (LB4404) in the selected medium containing kanamycin was 33%. Also, PCR analysis of transgenic plants showed a prevalence of transgenics of 33%. In addition, amplification of the bp fragment indicated the accuracy of cloning in transgenic plants. The results indicate the successful transfer of this gene to the sesame plant to increase its industrial properties. The results of the analysis of variance showed that there was a significant difference in the expression of sesamin-producing genes between transgenic cultivar and control groups (P <0.01). 

    Conclusions

    Since pBI121-based expression vectors are more efficient than other expression vectors and are widely used in the transfer of recombinant genes to plants, the recombinant vector constructed in this study indicates successful gene transfer. Sesame to sesame plant to increase its industrial properties.

    Keywords: Expressive vector, cloning, Sesamin, Sesamum indicum}
بدانید!
  • در این صفحه نام مورد نظر در اسامی نویسندگان مقالات جستجو می‌شود. ممکن است نتایج شامل مطالب نویسندگان هم نام و حتی در رشته‌های مختلف باشد.
  • همه مقالات ترجمه فارسی یا انگلیسی ندارند پس ممکن است مقالاتی باشند که نام نویسنده مورد نظر شما به صورت معادل فارسی یا انگلیسی آن درج شده باشد. در صفحه جستجوی پیشرفته می‌توانید همزمان نام فارسی و انگلیسی نویسنده را درج نمایید.
  • در صورتی که می‌خواهید جستجو را با شرایط متفاوت تکرار کنید به صفحه جستجوی پیشرفته مطالب نشریات مراجعه کنید.
درخواست پشتیبانی - گزارش اشکال