جستجوی مقالات مرتبط با کلیدواژه "رده ی سلولی" در نشریات گروه "پزشکی"
جستجوی رده ی سلولی در مقالات مجلات علمی
-
مقدمهبا وجود استفاده ی گسترده، پوشش پروتئینی پایین و الگوهای اسمیری، از مهم ترین موانع بازدارنده برای استفاده از مطالعات پروتئومیک مبتنی بر ژل در بررسی های بالینی می باشد. بنابراین، در این مطالعه تلاش شد تا پوشش نمایه ی دو بعدی پروتئوم رده ی سلولی Hs578T، متعلق به سرطان پستان افزایش یابد و تاثیر کارآمدی روش های مرسوم حذف مداخله گرهای غیر پروتئینی در افزایش تعداد پروتئین ها در نمایه ی دو بعدی ارزیابی گردد.روش هاسلول های رده ی Hs578T، به منظور استخراج عصاره ی خام سلولی، در بافر لیز مناسب تیمار شدند. عصاره های سلولی حاصل از استخراج های متعدد، با هم همگن و در حجم های یکسان تقسیم شدند و در سه تکرار، با روش های استون، استون- متانول و تری کلرواستیک اسید (Trichloroacetic acid یا TCA)- استون خالص گشتند. سپس، پروتئوم خالص تهیه شده از هر روش، در یک بافر بازآب رسانی استاندارد حل شد و بر روی نوارهای Immobilized pH gradient (IPG) 17 سانتی متری بارگذاری گشت. پس از تفکیک ایزوالکتریک در بعد اول، محتوای پروتئوم، یک بار دیگر در سیستم الکتروفورز O''Farrell نیز مورد تفکیک الکتروفورتیک قرار گرفت. در نهایت، پس از ظهور نقاط پروتئینی در نمایه ی دو بعدی، تصاویر حاصل با استفاده از نرم افزار ImageMaster به صورت کمی- کیفی تحلیل شدند.یافته هابازده بازیابی پروتئوم، برای روش های استون، استون- متانول و TCA- استون به ترتیب 001/0 ± 100/0، 002/0 ± 070/0 و 005/0 ± 120/0 نانوگرم به ازای هر سلول محاسبه شد. آنالیز تصویر نیز حضور 9 ± 1299 نقطه ی پروتئینی را در نمایه ی دو بعدی تخلیص شده با استون نشان داد که این تعداد برای تخلیص با استون- متانول و TCA- استون به ترتیب 14 ± 1698 و 17 ± 1973 بود. نتایج از سه اندازه گیری جداگانه به دست آمد.نتیجه گیریآماده سازی نمونه ها با روش TCA- استون، نه تنها بالاترین بازده بازیابی پروتئین را دارد؛ بلکه، پوشش پروتئومی بهتری را نیز ارایه می دهد. بنابراین، این روش برای مطالعات پروتئومیک مقایسه ای توصیه می گردد. با این وجود، تخلیص با استون- متانول، با توجه به ارایه ی نقاط پروتئینی قوی تر، برای مطالعات سرولوژیکی پروتئوم پیشنهاد می گردد.کلید واژگان: پروتئین, تخلیص, الکتروفورز دو بعدی, رده ی سلولی, سرطان پستانBackgroundIn spite of the wide use, low proteome coverage and fuzzy patterns are the most important deterrents for the clinical applications of gel-based proteomic studies. So herein, we tried to increase the 2-dimentional proteome coverage of Hs578T breast cancer cells via investigating the efficacy of the three common techniques, usually used for interfering removal.MethodsHs578T cells were incubated in a lysis solution to obtain raw cell extracts. Cellular soups of each extraction were then pooled, homogenized, and aliquoted to be further treated by three different protein-specific purification methods including acetone, acetone-methanol, and trichloroacetic acid (TCA)-acetone, each in triplicates. All the purified protein pellets were then dissolved in a standard rehydration buffer solution, loaded into the 17-cm immobilized pH gradient (IPG) strips, and separated according to their isoelectric points. Proteins were then separated once more according to their molecular weights in an OFarrell separation system. Finally, by the visualization of the protein spots on the 2-dimentional profiles, quality and quantity of these 2-dimentional proteome patterns were then analyzed using the ImageMaster software.
Findings: The obtained proteome recovery yields and total protein counts for acetone, acetone-methanol, and trichloroacetic acid-acetone methods were 0.100 ± 0.001, 0.070 ± 0.002, and 0.120 ± 0.005 ng/cell, and 1299 ± 9, 1698 ± 14 and 1973 ± 17, respectively. The results represent data obtained from three independent experiments.ConclusionTrichloroacetic acid-acetone purification not only represented the highest recovery yield, suitable for expensive assays, but also showed the most suitable proteome coverage. So, the method is recommended for the comparative proteomic studies. However, the acetone-methanol procedure is more recommended for serological proteome analysis (SERPA); since it represents stronger protein spots which are more fitted to the immunoblotting procedure.Keywords: Proteome, Purification, Two-dimensional gel electrophoresis, Cell line, Brest cancer -
مقدمهژن های سرطانی- بیضه ای (Cancer-testis genes) فقط در بافت طبیعی بیضه بیان می شوند؛ اما برخی از آن ها در بعضی از انواع سرطان ها بیان می شوند. این ژن ها می توانند کاندیدای امید بخشی برای درمان سرطان پستان باشند. این پژوهش برای بررسی فراوانی بیان این ژن ها در رده های سلولی سرطان پستان و مقایسه ی بیان آن ها در نمونه های سرطان پستان انجام شد.روش هادر این مطالعه ی تحلیلی- توصیفی، پس از تهیه ی سه رده ی سلولی سرطان پستان (7-MCF (Michigan cancer foundation-7)، 20-BT و 231-MDA-MB) و کشت آن ها در محیط های مناسب، استخراج RNA و ساخت cDNA (Complementary DNA) انجام شد و با روش Multiplex RT-PCR (Multiplex real time-polymerase chain reaction)، بیان رونوشت های a1 1-ESO-NY (Cancer/testis antigen 1A)، b1 1-ESO-NY (Cancer/testis antigen 1B)، 3MAGE (3Melanoma-associated antigen)، 2SSX (2Synovial sarcoma، X breakpoint) و 1SCP (1Synaptonemal complex protein) مورد بررسی قرار گرفتند.یافته هاهیچ کدام از رده های سلولی مورد مطالعه، ژن های سرطانی- بیضه ای مورد بررسی را بیان نکردند. در حالی که تمام رده های سلولی مورد بررسی، ژن شاهد داخلی (GAPDH یا Glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase) را بیان نمودند.نتیجه گیریبا توجه به نقش این ژن ها در گامتوژنز، می توان بیان این ژن ها را در سلول های سرطانی مبنی بر تمایززدایی دانست. البته تفاوتی که در فراوانی بیان این ژن ها در رده ی سلولی سرطان پستان و نمونه های توموری مشاهده شده است، می تواند به پاساژ های متعددی که برای تهیه ی رده های سلولی انجام می شود، مربوط باشد و همچنین با بررسی تعداد بیشتری از رده های سلولی سرطان پستان برای این ژن ها، می توان به نتایج دقیق تری دست یافت.
کلید واژگان: سرطان پستان, ژن های سرطانی, بیضه ای, نشانگر زیستی, رده ی سلولیBackgroundCancer-Testis genes (CT-genes) are a gene family that only expressed in normal testis tissue and some of them are randomly expressed in some types of cancers. These genes can be promising cases for immunotherapy of breast cancer. This research was carried out for comparison of the expression frequencies these genes in cancerous cell lines and tumor samples.MethodsIn this analytical-descriptive study, after providing three breast-cancer cell lines and their cultures in appropriate medium, RNA extraction and cDNA synthesis were done and expressions of NY-ESO-1 1a, NY-ESO-1 1b, SCP1, SSX-2 and MAGE-3 genes were studied using multiplex real time-polymerase chain reaction (multiplex RT-PCR) method.FindingsNone of cell lines expressed Cancer-Testis genes; but all of them expressed glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase (GAPDH) gene (internal control).ConclusionAccording to the role of these genes in gametogenesis, we can consider that their expressions in cancer cells are based on dedifferentiation. The observed difference between expression frequency of these genes in breast-cancer cell lines and tumor samples can be related to several passages which are carried out for providing cell lines. By examining more cell lines of breast cancer for these genes, we can achieve more accurate results.Keywords: Breast cancer, Cancer, Testis genes, Biological marker, Cell lines -
مقدمهمایکوپلاسماها از آلوده کنندگان اصلی رده های سلولی هستند که به عنوان مشکل عمده ی اقتصادی و بیولوژیکی در زمینه های تحقیقات پایه تشخیص و فرآورده های بیوتکنولوژی در نظر گرفته می شود. تشخیص مایکوپلاسما در کشت های سلولی ابتدا به وسیله ی کشت میکروبی آغاز شد و سپس رنگ آمیزی DAPI و آزمایش های سرولوژی از قبیل آزمایش ایمونوفلورسانس غیر مستقیم، آزمایش DNAprobe، PCR-ELISA، PCR و Real-Time PCR برای شناسایی مایکوپلاسما توسعه یافت.روش هادر این مطالعه، یک روش سریع حساس اختصاصی برای تشخیص گونه های مختلف مایکوپلاسما در کشت های سلولی مورد استفاده قرار گرفت. این روش بر اساس واکنش PCR و با استفاده از پرایمرهای اختصاصی جنس 11 گونه ی مختلف مایکوپلاسما انجام گرفت.یافته هااز 183 رده ی سلولی مختلف موجود در بانک سلولی مورد بررسی با روش PCR 6/48 درصد رده های سلولی آلودگی به مایکوپلاسما را نشان داد؛ در حالی که با روش کشت میکروبی 3/27 درصد از رده های سلولی آلودگی به مایکوپلاسما را نشان دادند. نتایج به دست آمده توسط روش PCR در مقایسه با روش کشت میکروبی حساسیت 100 درصد و ویژگی 7/70 درصد را نشان دادنتیجه گیرینتایج به دست آمده با استفاده از پرایمرهای اختصاصی گونه های مختلف مایکوپلاسما نشان داد که مهم ترین و عمده ترین گونه های آلوده کننده ی رده های سلولی به ترتیب اهمیت آلودگی شامل مایکوپلاسما فرمانتانس، مایکوپلاسما آرجینینی، مایکوپلاسما هیوراینیس و مایکوپلاسما اورال بودند. این مطالعه همچنین نشان داد که برخی از رده های سلولی با بیش از یک گونه مایکوپلاسما آلوده بودند.
کلید واژگان: مایکوپلاسما, رده های سلولی, کشت میکروبی, PCRBackgroundMycoplasma is a major contaminant of cell lines and is cosiderd as a serious problem of economic and biological importance in basic research, diagnosis, and biotechnology products. Detection of mycoplasma infection in cell cultures started on microbiological culture; later, other methods like DAPI staining and serological tests such as Indirect Immunofluorescnse, ELISA, DNA probe, PCR, PCR-ELISA, and Real-Timr PCR developed for detection of mycoplasma.MethodsIn this study, a sensitive, specific, and rapid method was used for detection of varity of mycoplasma species in cell lines. This method was based on a PCR reaction using genus specific primers for 11 mycoplasma species.ResultsMycoplasma contamination using this assay was examind for 183 different cell line deposited in national cell bank of Iran. PCR showed that 48.6% of cell lines were contaminated with mycoplasma while 27.3% of them were found to be infected. In comparison to microbiological culture, PCR method was shown to be 100% sensitive and 70.7% specific.ConclusionOur results using species specific primers reveald that the most important contaminating mycoplasma species in cell lines were mycoplasma fermentans, mycoplasma arginini, mycoplasma hyorhinis, and mycoplasma orale. We were also able to identify a number of cell lines which were contaminated whit more than one species of mycoplasma.
نکته
- نتایج بر اساس تاریخ انتشار مرتب شدهاند.
- کلیدواژه مورد نظر شما تنها در فیلد کلیدواژگان مقالات جستجو شدهاست. به منظور حذف نتایج غیر مرتبط، جستجو تنها در مقالات مجلاتی انجام شده که با مجله ماخذ هم موضوع هستند.
- در صورتی که میخواهید جستجو را در همه موضوعات و با شرایط دیگر تکرار کنید به صفحه جستجوی پیشرفته مجلات مراجعه کنید.